細胞內(nèi)蛋白質(zhì)的提取：

1、Trixon-100或NP-40裂解液裂解；

2、凍融裂解法；

3、研磨法；

“經(jīng)典的就是分子克隆2講的，用RIPA裂解，然后刮下來，冰裕30min，超生，4度離心10min"

（1） 單層貼壁細胞總蛋白的提取：

1、倒掉培養(yǎng)液，并將瓶倒扣在吸水紙上使吸水紙吸干培養(yǎng)液（或?qū)⑵恐绷⒎胖靡粫菏箽堄嗯囵B(yǎng)液流到瓶底然后再用移液器將其吸走）。

2、每瓶細胞加3ml 4℃預冷的PBS（0.01M pH7.2～7.3）。平放輕輕搖動1min洗滌細胞，然后棄去洗液。重復以上操作兩次，共洗細胞三次以洗去培養(yǎng)液。將PBS棄凈后把培養(yǎng)瓶置于冰上。

3、按1ml裂解液加10 μl PMSF（100mM），搖勻置于冰上。（PMSF要搖勻至無結(jié)晶時才可與裂解液混合。）

4、每瓶細胞加400 μ含PMSF的裂解液，于冰上裂解30min，為使細胞充分裂解培養(yǎng)瓶要經(jīng)常來回搖動。

5、裂解完后，用干凈的刮棒將細胞刮于培養(yǎng)瓶的一側(cè)（動作要快），然后用槍將細胞碎片和裂解液移至1.5ml離心管中。（整個操作盡量在冰上進行。）

6、于4℃下12000rpm離心5min。（提前開離心機預冷）

7、將離心后的上清分裝轉(zhuǎn)移倒0.5min的離心管中放于－20℃保存。

（2） 組織中總蛋白的提取：

1、將少量組織塊置于1～2ml勻漿器中球狀部位，用干凈的剪刀將組織塊盡量剪碎。

2、加400 μl單去污劑裂解液裂（含PMSF）于勻漿器中，進行勻漿。然后置于冰上。

3、幾分鐘后再碾一會兒再置于冰上，要重復碾幾次使組織盡量碾碎。

4、裂解30 min后，即可用移液器將裂解液移至1.5ml離心管中，然后在4℃下12000rpm離心5min，取上清分裝于0.5ml離心管中并置于－20℃保存。

（3） 加藥物處理的貼壁細胞總蛋白的提取：

由于受藥物的影響，一些細胞脫落下來，所以除按（一）操作外還應收集培養(yǎng)液中的細胞。以下是培養(yǎng)液中細胞總蛋白的提取：

1、將培養(yǎng)液倒至15ml離心管中，于2500rpm離心5min。

2、棄上清，加入4ml PBS并用槍輕輕吹打洗滌，然后2500rpm離心5min。棄上清后用PBS重復洗滌一次。

3、用槍洗干上清后，加100 μl裂解液（含PMSF）冰上裂解30min，裂解過程中要經(jīng)常彈一彈以使細胞充分裂解。

4、將裂解液與培養(yǎng)瓶中裂解液混在一起4℃、12000rpm離心5min，取上清分裝于0.5ml離心管中并置于－20℃保存。

（二）蛋白含量的測定

（1） 制作標準曲線

1、從－20℃取出1mg/ml BSA，室溫融化后，備用。

2、取18個1.5ml離心管，3個一組，分別標記為0μg，2.5μg，5.0μg ，10.0μg ，20.0μg ，40.0μg。

3、按下表在各管中加入各種試劑。

0μg 2.5μg 5.0μg 10.0μg 20.0μg 40.0μg

1mg/ml BSA － 2.5μl 5.0μl 10.0μl 20.0μl 40.0μl

0.15mol/L NaCl 100μl 97.5μl 95.0μl 90.0μl 80.0μl 60.0μl

4、混勻后，室溫放置2min。在生物分光光度計（Bio－Photometer，Eppentoff）上比色分析。

（2） 檢測樣品蛋白含量

1、取足量的1.5ml離心管，每管加入4℃儲存的考馬斯亮藍溶液1ml。室溫放置30min后即可用于測蛋白。

2、取一管考馬斯亮藍加0.15mol/L NaCl溶液100 μl，混勻放置2分鐘可做為空白樣品，將空白倒入比色杯中在做好標準曲線的程序下按blank測空白樣品。

3、棄空白樣品，用無水乙醇清洗比色杯2次（每次0.5ml），再用無菌水洗一次。取一管考馬斯亮藍加95 μl 0.15mol/L NaCl NaCl溶液和5μl待測蛋白樣品，混勻后靜置2min，倒入扣干的比色杯中按sample鍵測樣品。

注意：每測一個樣品都要將比色杯用無水乙醇洗2次，無菌水洗一次。可同時混合好多個樣品再一起測，這樣對測定大量的蛋白樣品可節(jié)省很多時間。測得的結(jié)果是5 μl樣品含的蛋白量。

（三） SDS－PAGE電泳

（1） 清洗玻璃板：

一只手扣緊玻璃板，另一只手蘸點洗衣粉輕輕擦洗。兩面都擦洗過后用自來水沖，再用蒸餾水沖洗干凈后立在筐里晾干。

（2） 灌膠與上樣

1、玻璃板對齊后放入夾中卡緊。然后垂直卡在架子上準備灌膠。（操作時要使兩玻璃對齊，以免漏膠。）

2、配分離膠，加入TEMED后立即搖勻即可灌膠。灌膠時，可用10ml槍吸取5ml膠沿玻璃放出，待膠面升到綠帶中間線高度時即可。然后膠上加一層水，液封后的膠凝的更快。（灌膠時開始可快一些，膠面快到所需高度時要放慢速度。操作時膠一定要沿玻璃板流下，這樣膠中才不會有氣泡。加水液封時要很慢，否則膠會被沖變型。） " S9 O. L+ `- T: E

3、當水和膠之間有一條折射線時，說明膠已凝了。再等3min使膠充分凝固就可倒去膠上層水并用吸水紙將水吸干。

4、配5％的濃縮膠，加入TEMED后立即搖勻即可灌膠。將剩余空間灌滿濃縮膠然后將梳子插入濃縮膠中。灌膠時也要使膠沿玻璃板流下以免膠中有氣泡產(chǎn)生。插梳子時要使梳子保持水平。由于膠凝固時體積會收縮減小，從而使加樣孔的上樣體積減小，所以在濃縮膠凝固的過程中要經(jīng)常在兩邊補膠。待到濃縮膠凝固后，兩手分別捏住梳子的兩邊豎直向上輕輕將其拔出。

5、用水沖洗一下濃縮膠，將其放入電泳槽中。（小玻璃板面向內(nèi)，大玻璃板面向外。若只跑一塊膠，那槽另一邊要墊一塊塑料板且有字的一面面向外。）

測完蛋白含量后，計算含50μg蛋白的溶液體積即為上樣量。取出上樣樣品至0.5ml離心管中，加入5×SDS 上樣緩沖液至終濃度為1×。（上樣總體積一般不超過20μl，加樣孔的最大限度可加25μl樣品。）上樣前要將樣品于沸水中煮5min使蛋白變性。

7、加足夠的電泳液后開始準備上樣。（電泳液至少要漫過內(nèi)測的小玻璃板。）用微量進樣器貼壁吸取樣品，將樣品吸出不要吸進氣泡。將加樣器針頭插至加樣孔中緩慢加入樣品。（加樣太快可使樣品沖出加樣孔，若有氣泡也可能使樣品溢出。加入下一個樣品時，進樣器需在外槽電泳緩沖液中洗滌3次，以免交叉污染。

（3） 電泳 電泳時間一般1-2 h，電壓為80較好，也可用100。電泳至溴酚蘭剛跑出即可終止電泳，進行轉(zhuǎn)膜。

（四）轉(zhuǎn)膜

（1） 轉(zhuǎn)一張膜需準備6張7.0～8.3cm的濾紙和1張7.3～8.6cm的硝酸纖維素膜。切濾紙和膜時一定要戴手套，因為手上的蛋白會污染膜。將切好的硝酸纖維素膜置于水上浸2 h才可使用。（用鑷子捏住膜的一邊輕輕置于有超純水的平皿里，要使膜浮于水上，只有下層才與水接觸。這樣由于毛細管作用可使整個膜浸濕。若膜沉入水里，膜與水之間形成一層空氣膜，這樣會阻止膜吸水。

（2） 在加有轉(zhuǎn)移液的搪瓷盤里放入轉(zhuǎn)膜用的夾子、兩塊海綿墊、一支玻棒、濾紙和浸過的膜。

（3） 將夾子打開使黑的一面保持水平。在上面墊一張海綿墊，用玻棒來回搟幾遍以搟走里面的氣泡。（一手搟另一手要壓住墊子使其不能隨便移動。）在墊子上墊三層濾紙（可三張紙先疊在一起在墊于墊子上），一手固定濾紙一手用玻棒搟去其中的氣泡。

（4） 要先將玻璃板撬掉才可剝膠，撬的時候動作要輕，要在兩個邊上輕輕的反復撬。撬一會兒玻璃板便開始松動，直到撬去玻板。（撬時一定要小心，玻板很易裂。）除去小玻璃板后，將濃縮膠輕輕刮去（濃縮膠影響操作），要避免把分離膠刮破。小心剝下分離膠蓋于濾紙上，用手調(diào)整使其與濾紙對齊，輕輕用玻棒搟去氣泡。將膜蓋于膠上，要蓋滿整個膠（膜蓋下后不可再移動）并除氣泡。在膜上蓋3張濾紙并除去氣泡。最后蓋上另一個海綿墊，搟幾下就可合起夾子。整個操作在轉(zhuǎn)移液中進行，要不斷的搟去氣泡。膜兩邊的濾紙不能相互接觸，接觸后會發(fā)生短路。（轉(zhuǎn)移液含甲醇，操作時要戴手套，實驗室要開門以使空氣流通。）

將夾子放入轉(zhuǎn)移槽槽中，要使夾的黑面對槽的黑面，夾的白面對槽的紅面。電轉(zhuǎn)移時會產(chǎn)熱，在槽的一邊放一塊冰來降溫。一般用60轉(zhuǎn)移2 h或40轉(zhuǎn)移3 h。 （6） 轉(zhuǎn)完后將膜用1×麗春紅染液染5min（于脫色搖床上搖）。然后用水沖洗掉沒染上的染液就可看到膜上的蛋白。將膜晾干備用。 / h3 P" o9 d8 n% U8 X. R

（五）免疫反應

（1） 將膜用TBS從下向上浸濕后，移至含有封閉液的平皿中，室溫下脫色搖床上搖動封閉1h。

（2） 將一抗用TBST稀釋至適當濃度（在1.5ml離心管中）；撕下適當大小的一塊兒保鮮膜鋪于實驗臺面上，四角用水浸濕以使保鮮膜保持平整；將抗體溶液加到保鮮膜上；從封閉液中取出膜，用濾紙吸去殘留液后，將膜蛋白面朝下放于抗體液面上，掀動膜四角以趕出殘留氣泡；室溫下孵育1～2h后，用TBST在室溫下脫色搖床上洗兩次，每次10min；再用TBS洗一次，10min。 （3） 同上方法準備二抗稀釋液并與膜接觸，室溫下孵育1～2h后，用TBST在室溫下脫色搖床上洗兩次，每次10min；再用TBS洗一次，10min，進行化學發(fā)光反應。

（六）化學發(fā)光，顯影，定影

將A和B兩種試劑在保鮮膜上等體積混合；1min后，將膜蛋白面朝下與此混合液充分接觸；1min后，將膜移至另一保鮮膜上，去盡殘液，包好，放入X-光片夾中。

在暗室中，將1×顯影液和定影液分別到入塑料盤中；在紅燈下取出X－光片，用切紙刀剪裁適當大小（比膜的長和寬均需大1cm）；打開X-光片夾，把X－光片放在膜上，一旦放上，便不能移動，關上X-光片夾，開始計時；根據(jù)信號的強弱適當調(diào)整曝光時間，一般為1min或5min，也可選擇不同時間多次壓片，以達最佳效果；曝光完成后，打開X-光片夾，取出X-光片，迅速浸入顯影液中顯影，待出現(xiàn)明顯條帶后，即刻終止顯影。顯影時間一般為1～2min（20～25℃），溫度過低時（低于16℃）需適當延長顯影時間；顯影結(jié)束后，馬上把X-光片浸入定影液中，定影時間一般為5～10min，以膠片透明為止；用自來水沖去殘留的定影液后，室溫下晾干。

應注意的是：顯影和定影需移動膠片時，盡量拿膠片一角，手指甲不要劃傷膠片，否則會對結(jié)果產(chǎn)生影響。凝膠圖象分析 將膠片進行掃描或拍照，用凝膠圖象處理系統(tǒng)分析目標帶的分子量和凈光密度值。